聽課筆記 | 第九屆李曼中國養豬大會主論壇（15日下午分會 三場合輯）

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分會1-----疾病防控

2020年10月15日下午

2020年10月15日，第九屆李曼中國養豬大會分會1----疾病防控在重慶悅來國際會議中心舉行。本次大會由新希望六和首席科學家閆之春，華中農業大學周銳博士主持。

分會一：疾病防控

01、中國養豬業健康管理的變遷之路

樊福好，農業農村部種豬質量監督檢驗測試中心（廣州）

政策的變遷

定點清除

官方檢測

鼓勵養殖

自主檢測

三公里撲殺（已經改變）

選址

高地、干燥

免疫

減少了部分常規免疫

消毒方式多樣

復方過氧一硫酸鉀

過氧乙酸

戊二醛

苛性鈉

碘制品

電解水

紫外線

通風方式

更傾向于垂直通風

料槽

從通槽到單體槽

采樣和檢測

口腔液得到更多的應用

飼料

飼料加工方式：高溫制粒，熟化

營養需求

營養冗余

關鍵技術

單元格化技術

唾液檢測技術

生物隔離技術

熱化處理技術

營養冗余技術

02、豬偽狂犬病的綜合防治與凈化

吳斌，華中農業大學

1、豬偽狂犬病的特點

• PRV的免疫學特點：體液免疫、細胞免疫、局部免疫；免疫保護期
• PRV的流行病學特點：多種動物可感染或帶毒；
  可建立潛伏感染并間斷性排毒；
  

• 豬感染后的臨床特點：仔豬；保育豬；生長育肥豬；
  種豬（公豬、妊娠母豬、哺乳母豬、后備種豬）
  

2、偽狂犬病在中國的兩次大流行

3、病毒分子流行病學

45株偽狂犬病病毒臨床毒株的全基因組重測序：

45株PRV基因組中存在較多的變異區域

PRV遺傳進化分析顯示主要分為2個主要的基因型：

所有的中國分離株位于基因2型，而國外分離株全部位于基因1型。

PRV間存在較強的同源重組現象

• 最新研究針對PRV感染人的病例，提出人偽狂犬病腦炎的定義，特征與診斷依據。
• 2019年首次從患者腦脊液中分離得到一株PRV hSD-1/2019，為PRV向人群的跨種傳播提供了直接有力的病毒分離證據。
• 生物學特性及基因組分析發現，hSD-1/2019毒株與我國豬群中當前流行的PRV變異毒株高度相似。
  

4、豬偽狂犬病的防控

建議免疫程序（依感染風險評估調整）

• 種豬：“3+2免疫程序” ，即一年普免3次活疫苗，每胎產前免疫滅活疫苗（首次滅活疫苗應免疫2次，間隔4周）；
• 后備：配種前8周齡一次免活疫苗 ；配種前4周滅活苗加強免疫；產前4周滅活疫苗免疫，以后按生產母豬免疫程序。
• 仔豬：“2+1+1免疫程序” 0日齡和45日齡活疫苗；90-95日齡滅活苗；（生產周期6-7月以上豬群在140日齡加強免疫一針活苗），種用豬120－130日齡免疫活苗。
  

5、豬偽狂犬病的防控

• 用安全性高的基因缺失疫苗（推薦HB-98或2000株） 進行基礎免疫
• 結合滅活疫苗，進行強化免疫，阻止感染和后備豬陽轉
• 凈化種豬群，每年公豬和后備豬應為全陰性
  （豬只感染病毒將終身攜帶，成為該病傳染源）
• 維持種群凈化，實現免疫無疫，探索非免疫無疫
  

6、豬偽狂犬病的凈化

7、豬偽狂犬病的凈化過程

準備階段：

• 根據豬場規模、豬群結構和分布特點，設計合理的采樣方案，對豬場進行摸底調查，掌握場內偽狂犬病疫情狀況；
• 評估豬群免疫保護水平（有條件采用中和抗體水平評價或細胞免疫水平評價），確定豬群的PRV gE轉陽時間點與gB消長規律；
• 評估豬場現有的免疫方案， 針對不同的豬群進行優化改進， 確保較高的免疫保護率。
  

控制階段：

免疫-監測

疫苗：含gE缺失的活疫苗和滅活疫苗 ；合理免疫程序；

監測：每半年進行一次血清學和病原學檢查 ，抽樣比例5～ 8%；

• 陰陽性豬分群飼養
  當gE陽性豬比例下降到20%以下時開始分群， 將血清學gE陽性豬與陰性豬分開飼養；
• 逐步淘汰和縮小陽性豬群
• 強化陰性群的隔離與監測， 建立完全健康的gE陰性豬群， 確保后備豬群陰性
• 其它疫病的感染控制
  

強制凈化階段：

• 對全群豬只進行檢測， 剔除全部陽性豬只；
• 剔除后建立的健康豬群于一個月后按10％比例抽樣復查， 無陽性豬則三個月后按相同方法進行復查，連續兩次為陰性者則每半年進行一次血清學和病原學抽樣復查， 抽樣復查如有陽性， 在陽性率1%以內， 按剔除后建立的健康豬群方式進行免疫和監測， 1%－ 5%則重新進行全群檢測剔除全部陽性豬只；
• 關鍵點：公豬、 后備種豬
• 哨兵豬設置
  

8、凈化的非技術性關鍵因素

03、我們從亞太地區非洲豬瘟形勢和防控行動學到了什么
楊振，南京農業大學

背景

亞太人均豬肉消費多，有明顯的豬肉飲食文化，全球豬肉產量大。

全球非洲豬瘟概況

亞太地區非洲豬瘟形勢

亞太地區非洲豬瘟防控國家案例

主要介紹和韓國和越南的非洲豬瘟案例

總結

非洲豬瘟疫情仍在亞太地區蔓延和反復

亞太國家的防非的重點因主要面臨的風險因素而不同，ASF在野豬和環境的防控難度大于常規豬場的防控和凈化；養豬價值鏈復雜的國家，防控難度大

疫情報告數據和流行病學調查和分享有利于發現風險因素和疫情變化規律

國家防控非洲豬瘟等跨境動物傳染病成敗因素：政治意愿、養豬價值鏈復雜度、國家區位因素、養殖基礎信息、疫病防控設施、多部門合作水平、產業和政府之間的互信、動物疫病應急管理能力和專業人才隊伍。

分會2-----PED防控

2020年10月15日下午

2020年10月15日，第九屆李曼中國養豬大會分會2----PED防控在重慶悅來國際會議中心舉行。本次大會由哈爾濱獸醫研究所馮力博士主持。大會精彩筆記內容如下：

01、成功的清潔和衛生以防控制豬流行性腹瀉

克萊頓·約翰孫獸醫博士，迦太基獸醫服務有限公司

一、 豬流行性腹瀉是可防可控的

PED可以利用您現有的資源進行預防和控制

二、 腹瀉防控的關鍵點

• 理解的關鍵點
• 工作量巨大
• 初期成功率較低
• 不能犯任何錯誤
• 我們有充足的人力和時間來完成工作
• 清潔和消毒的有效方法很多
• 沒有一個計劃適合每個農場
• 許多計劃都有可能奏效
  

三、 清潔和消毒

幾乎不可能對骯臟的表面進行消毒

細菌產生的生物膜可以覆蓋在表面，用耐水的貝殼膠保護微生物，耐消毒，并能隨著時間的推移釋放出病原體

堿性清潔劑可以降解和皂化生物膜

四、 停工期

分娩室：最少需要兩晚

分娩室：最少需要兩晚

第一天：清潔、沖洗、干燥、消毒

石灰水清洗

裝載

保證養豬區域的清潔、溫度和空置

盡可能地保持房間的熱量

使用蠑螈式加熱器，從一個房間移動到另一個房間

為養殖場的清潔區、檢查區、和核準通過區準備新的衣服和靴子

與之前使用過的衣服靴子不同顏色

02、豬病毒性腹瀉防控面臨的挑戰與對策

馮  力，哈爾濱獸醫和研究所

哈爾濱獸醫研究所的馮力研究員，給大家分享了豬病毒性腹瀉科學防控的難點、要點及主要誤區

豬病毒性腹瀉的基本知識

豬病毒性腹瀉的特點：

主要以侵染消化道、導致豬只嘔吐、腹瀉、脫水和哺乳仔豬高死亡率的一類病毒性傳染病。

嘔吐，水樣腹瀉，脫水，哺乳仔豬的高死亡率

無體溫升高，瀕死期體溫降低

所有日齡豬只均可感染，日齡增加，死亡率下降

病原為病毒，具有極強的傳染性

冬春季節多發，夏季發生也成“新常態”

抗菌素治療無效

豬病毒性腹瀉科學防控的難點

難點一：引起腹瀉的因素復雜

難點二：腹瀉病臨床上難以區分

難點三：多基因型（血清型）

難點四：新的病原的出現

難點五：抗原性的變異

難點六：病原的致病性弱，免疫源性差

難點七：混合感染導致病情更為嚴重

難點八：缺少最好的抗原遞呈途徑

科學防控豬病毒性腹瀉的四大要點

要點一：明確病因（正確的診斷）

要點二：科學的抗體檢測（監測）

要點三：科學免疫策略

要點四：完善的生物安全措施

防控的關鍵點：

確定發病病原!確診。

做好全群免疫，不留易感豬群（尤其是做好后備母豬【初產母豬】，后備公豬的免疫）！

列入常規免疫計劃而非季節性免疫

抗體檢測（監測）在活疫苗免疫中非常重要！

嚴格的生物安全措施:多點飼養，全進全出，嚴格的消毒與空舍！

做好產子舍保溫！

避免應激，提高機體自身抗病力

豬病毒性腹瀉的四大誤區

第一個是概念與觀念誤區

腹瀉不等于豬病毒性腹瀉

望文生義TGEV≠PEDV≠PDCV≠PoRV

病毒性腹瀉只有冬天發生

豬病毒性腹瀉只感染小豬，不感染大豬

豬病毒性的損失只在哺乳仔豬

第二個是診斷誤區

診斷想當然，僅憑借臨床癥狀來判斷

一次實驗室診斷結果用幾次或一兩年

實驗室診斷不全面，只做PEDV檢測

不能區分疫苗毒與野毒

試驗室檢測水平不同，結果的科學與真實無保證

第三個是疫苗免疫誤區

不當傳染病對待，只是局部免疫（母豬免）

經產與后備母豬一樣免疫

等到發病了，才接種疫苗，疫苗當治療制劑

只有流行季節前做，平時基本不進行免疫

過度依賴疫苗，不重視生物安全

反復返飼

第四個是生物安全誤區

不重視生物安全

做不到真正的全進全出

消毒不徹底，空舍時間過短

不把引種、隔離當回事

綜合管理出現漏洞

03、非洲豬瘟威脅下新建群病毒性腹瀉的防控

顏 忠，新希望六和養豬研究院

腹瀉病毒的基本生物學特性

屬于套式病毒目、冠狀病毒科、甲型冠狀病毒屬

RNA病毒，基因組大小28kb，

在4℃下可以在金屬上存活20天，在聚苯乙烯泡沫塑料、鋁、Tyvek®工作服、布和塑料上最多可以存活15天

pH <4和pH>9時病毒被完全滅活

一般性消毒藥均可滅活PEDV，如氧化劑（Virkon S）,漂白劑, 2％氫氧化鈉

糞-口途徑是PEDV傳播的主要手段，無癥狀感染的大豬，能夠造成病毒的亞臨床傳播。

豬場PED感染狀態分類

豬場PED控制和根除策略

后備豬全群返飼馴化—激活粘膜免疫系統

在生產實踐中PED主要發生在初產母豬，PEDV感染對初產母豬生產性能的影響比經產母豬更加嚴重，對生產性能的影響程度取決于感染的階段（Olanratmanee, 2010）

在入群之前使用對后備母豬進行返飼誘導免疫力將是有利的。（Anchalee Srijangwad，2017）

妊娠母豬或待產后備豬通過強毒（感染新生仔豬腸道或其他感染性材料）暴露進行PEDV馴化使母豬產生針對 PEDV 的免疫保護（Niederwerder and Hesse, 2018)

激活后備豬的粘膜免疫系統的對于保護母豬腸道至關重要（Jung K, Saif 2015），通過腸-乳腺-sIgA 軸將抗體提供給仔豬，初乳/奶水中PEDV特異性sIgA抗體的水平是決定其仔豬抵抗PEDV感染的的關鍵(Langel et al., 2019a; Saif et al., 2012)

綜上所述，新建群對后備豬全群進行PED統一馴化至關重要。

非洲豬瘟威脅下新建群PED防控難點

養豬企業進行復產、擴產，三邊生產（邊發展、邊建設、邊生產），新場、新員工、新豬群，面臨各種復雜的問題和挑戰，

豬群來源不同的豬場、品種不一致，健康度不一致，免疫背景不一致，給混群帶來了極大的風險，

過往的全群返飼馴化技術（使用腸道、糞便）操作難度大、病毒含量不確定、成本高、效果不確實并存在其他病原污染的風險，ASF威脅下，這種風險進一步加大，

面對這些問題，我們必須開發出安全性高，抗原匹配度高、含量高、均一、成本低的產品（S蛋白亞單位疫苗、病毒分離純化等等）。

新建群PED防控新方法

（一）、新建廠生物安全升級及分區管理

（二）、變異毒株疫苗的應用

（三）、新建群后備豬全群馴化新技術

1、PED微生態調節劑的研發2、馴化方案實施3、免疫器械的準備4、飼喂方式5、監測方案6、減毒方法7、關鍵點8、馴化效果評估--臨床表現數據分析

總結

1、科學的方法是取得PED防控勝利的最大法寶；

2、生物安全是防控PED的根本；

3、首次實現了新建群全群PED統一馴化，這種新方法安全高效、抗原匹配度高、含量高、劑量準確、效果確實、成本低；

4、新建群引種結束之后，在距離分娩前2個月左右馴化1次，能夠為仔豬提供高水平的IgA抗體，并保證足夠的排毒和減毒時間，對生產影響最小；

5、馴化后場內病原凈化+初乳高水平IgA抗體水平是豬群維持穩定的關鍵；

6、采集環境樣品可以作為定期監測豬群和環境中PEDV活躍的一種方法；

7、可以采集口腔液和初乳用于監測評估IgA抗體水平。

分會3-----診斷檢測

2020年10月15日下午

2020年10月15日，第九屆李曼中國養豬大會分會3----診斷檢測在重慶悅來國際會議中心舉行。本次大會由中國動物疫病預防控制中心獸醫學博士原霖主持。大會精彩筆記內容如下：

01、使用診斷檢測的對與錯

杰里·托里森   明尼蘇達大學

概要

簡述: 診斷使用的不當之處

1、使用過于寬泛的計劃

2、使用局限性太大的計劃

3、對實驗室隱瞞信息

有效的診斷方法

1、有一個計劃好的診斷目標

2、了解疾病動態

3、了解測試能力

明確說明診斷目標

示例:

1. 我想用一個毒株來生產疫苗。

2. 我需要確定這個豬群沒有感染過豬肺炎支原體。

有限的診斷性調查僅提供有限的結果

“任何器官都不是一座孤島，也就是說，所有東西都是相互關聯的。”

          - 明尼蘇達大學獸醫診斷實驗室，斯蒂芬妮·羅索博士

限制成功的診斷方法：

• 我已經知道有什么問題了。
• 我知道錯出在哪里，并想證明這一點。
  

了解全面情況

呼吸系統疾病動態

了解測試能力

樣本類型效應

是否需要活病毒或細菌?

如果需要后續測試該怎么辦?

信息生成

是否有基線資料可供比較?

這是第一次診斷嘗試，還是需要測試之外的工作?

我將如何使用得到的測試結果?

02、診斷及控制保育期腹瀉

法比奧·萬努奇   明尼蘇達大學

診斷及控制保育期腹瀉

腸毒素性大腸桿菌（ETEC）

防控：

• 氧化鋅(1500-3000ppm)
  

-減少腹瀉、降低死亡率、提高性能（生長和飼料轉化率）

-作用機制尚不完全清楚：粘膜完整抑制細菌黏附（？）

-環境問題和共同抗藥性(四環素和磺胺類藥物)

• 有機酸
  

-抑制微環境的酸化

-作用方式不明

-效力差異很大，結果相互矛盾

• 免疫預防
  

-新生豬仔ETEC腹瀉：通過被動的結腸/乳源性免疫來預防。

-斷奶后ETEC腹瀉：需要積極的腸道粘膜免疫反應。

• 肌肉注射：商用和自家
• 口服 (非致病性表現菌毛，不產生腸毒素)
• 亞單位口服：正在研發中，F4和F18免疫原性有差異
  

-不同菌毛間的交叉保護（？）

腸道沙門氏菌

• 沙門氏菌腸道血清型傷寒桿菌
• 沙門氏菌腸道血清型I 1,4,[5],12&#8201;:&#8201;i:‐
  

-新出現的傷寒桿菌血清型變體

-近年來美國豬沙門氏菌病的臨床主要病因

• 無法區分的臨床表現
  

-持續5-7天水樣腹瀉（零星血跡）

-脫水，以及整個保育-育肥階段表現不佳

未來的挑戰：對抗菌素使用的限制

歐洲經驗：疾病發生率（禁止使用抗菌素作為生長促進劑之前及之后對比）

• 腹瀉顯著增加（保育）
  

-斷奶后腹瀉：β-溶血性大腸桿菌

-螺旋體結腸炎

-臨床回腸炎（細胞內勞森菌）

• 規模很關鍵
• 管理及其他替代策略
  

• 豬呼吸道疾病綜合征（PRDC)
  

-成功控制原發性誘發因素：接種疫苗、消滅病毒

• 豬腸道疾病綜合征（PEDC) ？？？
  

-腸道細菌是主要原因

-協同作用：輪狀病毒、大腸桿菌（？）

• 微生物組的復雜性
  

三代測序技術基本原理

準確度：單條序列的準確率約85%，拼接后可達99%，準確度低于二代測序和一代測序；

測序長度：單端幾百bp-幾M，長度最長；

測序成本：目前比二代和一代測序成本高；

測序通量：可達數百萬條以上片段，幾十G-幾T的數據量；

PCR：無需PCR，直接測序。

數據分析：要求高，需要專業的生物信息學分析工具。

其他：可進行RNA直接測序，Nanopore的minion測序儀可以做到隨身攜帶。

Nanopore的Minion便攜式測序儀是第一款普通實驗室都可以配置的測序儀，也使得測序技術可以真正廣泛應用于臨床檢測。

由于三代測序的高錯誤率和長度長特征，目前最適合應用于臨床樣品的宏基因組檢測。

案例分析

案例一  單病種感染

案例二  同一病種多種樣品

案例三  混合感染

案例四  非常規檢測病原感染

應用展望